Rigenerazione del tessuti duri

EMPOWERING REGENERATION

A REGEDENT, ci concentriamo sulla rigenerazione dei tessuti duri facendo sostituire l'impalcatura artificiale con cellule ossee autogene, fornendo un volume osseo stabile e riducendo al minimo il numero di interventi chirurgici. In definitiva, i pazienti beneficiano di una migliore prevedibilità del trattamento, combinata con risultati a lungo termine.

Cos'è la rigenerazione dei tessuti duri ?

La perdita ossea è un segno distintivo significativo in odontoiatria. In parodontologia, per esempio, gli agenti patogeni, i fattori genetici e le questioni ambientali, come il tabacco, possono portare alla perdita ossea. Questo può portare al movimento del dente, alla dislocazione e, infine, alla perdita del dente stesso [1,2].

In implantologia, l'uso degli impianti dentali porta notevoli vantaggi ai pazienti. Tuttavia, presenta alcuni rischi causati dall'uso di materiali inerti a contatto diretto con l'osso e dall'assenza del legamento parodontale (PDL). Il PDL permette elasticità nella distribuzione delle forze di masticazione e, se assente, può portare al riassorbimento dell'osso mascellare [3,4].

Quattro tipologie di rignerazione ossea

Per migliorare il processo di osteogenesi vengono utilizzate diverse tecniche, come l'innesto osseo [5], gli scaffold [6], le cellule staminali [7] e i fattori di crescita. L'innesto osseo aiuta a riempire i vuoti fisici creati dall'osso mancante o danneggiato, fornisce stabilità strutturale e stimola la crescita del tessuto osseo [8]. Gli innesti ossei sono divisi in quattro gruppi [9, 10]. In primo luogo, l'osso autogeno è considerato il "gold standard" per la sostituzione ossea [11], in quanto viene utilizzato con un trattamento minimo ed è il materiale sostitutivo osseo più efficiente e di più rapida guarigione [8]. Le applicazioni cliniche hanno dimostrato che si ottiene nuovo osso e nuovi attacchi di tessuto connettivo parodontale [12].

In secondo luogo, le banche dei tessuti forniscono diversi tipi di innesti ossei allogenici [13]. È noto che non sono efficaci come gli autotrapianti a causa dei trattamenti chimici estesi richiesti per prevenire la potenziale infettività, interrompendo la struttura gerarchica dell'osso e rimuovendo una quantità significativa dei fattori di crescita necessari per una rigenerazione ossea efficiente [8].

In terzo luogo, gli xenotrapianti mostrano vantaggi distinti. Sono prodotti in massa a costi di lavorazione accessibili. Tuttavia, poiché provengono da tessuti ossei di altre specie, le loro caratteristiche osteologiche native sono diverse da quelle dei tessuti ossei umani. Tuttavia, tra gli xenotrapianti, alcuni, come i sostituti di origine suina, supportano la rigenerazione ossea grazie alle loro caratteristiche fisico-chimiche e alla loro struttura simile all'osso umano [8, 14,15]. Inoltre, l'osso suino ha un rischio relativamente basso di zoonosi [16].

Infine, i materiali sintetici da innesto, come l'idrossiapatite, sono utilizzati per la loro osteoconduzione, durezza e accettabilità da parte dell'osso. Alcuni innesti ossei sintetici sono fatti di carbonato di calcio, che comincia a diminuire nell'uso perché è completamente riassorbibile in breve tempo e facilita la rottura dell'osso. Quest'ultima categoria di materiale da innesto è sempre più ricercata in quanto presenta vantaggi interessanti che mancano al materiale xenograft.

Dieci segni per una rigenerazione ossea di successo

  1. Manipolazione semplice del materiale d'innesto e della membrana per un protocollo di trattamento economico e prevedibile
  2. Uso di materiale biocompatibile
  3. Rapida stabilizzazione dei coaguli di sangue
  4. Angiogenesi rapida
  5. Minimizzare il processo infiammatorio (gonfiore, disagio)
  6. Guarigione della ferita irregolare
  7. Densità ossea prevedibile
  8. Volume stabile per un posizionamento prevedibile dell'impianto
  9. Materiale riassorbibile per evitare ulteriori interventi chirurgici e per essere sostituito da cellule autogene
  10. Soddisfazione del paziente e del medico

La nostra soluzione per la rigenerazione ossea

Hyadent BG, Smartbrane, e Smartgraft sono progettati per sostenere la rigenerazione dei tessuti duri, e insieme sono ancora più facili da usare.

osso appiccicoso con Smartgraft e Hyadent BG per la rigenerazione delle tisue dure

Infatti, il gel combinato con l'osso poroso crea un putty appiccicoso in ~3 minuti, e la forza di trazione della membrana tiene bene il sito aumentato mentre si adatta facilmente alla superficie dell'osso, senza tuttavia attaccarsi. [20] L'acido ialuronico presente nel sito aumentato sembra accelerare la formazione dell'osso attraverso le sue proprietà migratorie e proliferative. [21-24]

La sinergia delle nostre soluzione rigenerative

L'acido ialuronico Hyadent BG attira il sangue e stabilizza il coagulo di sangue

Il portfolio di Regedent supporta la rigenerazione dei tessuti duri. Hyadent BG e Smartbrane contribuiscono a stabilizzare il coagulo di sangue [25-26]. L'acido ialuronico attira i fattori di crescita naturalmente presenti nel sangue e promuove la vascolarizzazione con il supporto, per esempio, di sostituti ossei di origine suina [27-29].

L'adesione e la proliferazione delle cellule ossee sono quindi facilitate dalle superfici ruvide della membrana suina e del sostituto osseo [26, 28-31]. Allo stesso tempo, l'acido ialuronico reticolato ad alto peso molecolare migliora la proliferazione cellulare complessiva [32-35]. Hyadent BG e Smartgraft contribuiscono ad accelerare la guarigione dell'osso mostrando un rimodellamento equilibrato del volume osseo [26, 36-41].

l'acido ialuronico rallenta il riassorbimento del collagene membrane

Durante il processo di guarigione dell'osso, lo sticky bone realizzato con Hyadent BG e Smartgraft beneficia del suo naturale scudo batteriostatico [42]. La membrana in collagene tiene insieme il sito di innesto durante il processo di guarigione. La sua funzione di mantenimento è addirittura prolungata attraverso la collagenasi rallentata grazie al precedente rivestimento della membrana con Hyadent BG [43].

Ricostruendo non solo l'estetica ma anche la struttura funzionale intorno al dente/impianto, Hyadent BG rigenera piuttosto che ripara [44-47].

Le proprietà di guarigione delle ferite del portfolio Regedent sono dettagliate in rigenerazione tessuti molli.

Casi clinici : rigenerazione ossea in diffetti intraossei

Difetti infraossei estesi dal Prof Andrea Pilloni con rigenerazione dei tessuti duri

Casi clinici : rigenerazione ossea prima di mettere un impianto

Aumento osseo guidato della cresta edentula mandibolare distale del Prof Darko Božić con rigenerazione dei tessuti duri

Contro malattie perimplantari / parodontali

Per la rigenerazione dei tessuti duri e molli

Membrana barriera riassorbibile

Sostituto osseo per il rimodellamento stabile del volume

Banner CLEAN&SEAL

Trattamento malattia peri-implantare/parodontale

Lettratura scientifica e casi clinci

  1. Hernández-Monjaraz B, Santiago-Osorio E, Monroy-García A, Ledesma-Martínez E, Mendoza-Núñez VM. Mesenchymal Stem Cells of Dental Origin for Inducing Tissue Regeneration in Periodontitis: A Mini-Review. Int J Mol Sci. 2018 Mar 22;19(4):944. doi: 10.3390/ijms19040944. PMID: 29565801; PMCID: PMC5979585. 
  2. Pihlstrom BL, Michalowicz BS, Johnson NW. Periodontal diseases. Lancet. 2005 Nov 19;366(9499):1809-20. doi: 10.1016/S0140-6736(05)67728-8. PMID: 16298220.
  3. Hasan I, Heinemann F, Bourauel C. The relationship of bone resorption around dental implants to abutment design: a preliminary 1-year clinical study. Int J Prosthodont. 2011;24(5):457–9.
  4. Maiorana C, Sigurta D, Mirandola A, Garlini G, Santoro F. Bone resorption around dental implants placed in grafted sinuses: clinical and radiologic follow-up after up to 4 years. Int J Oral Maxillofac Implants. 2005;20(2):261–6.
  5. Anushi, M.; Suresh, K. Periodontal bone regeneration in intrabony defects using osteoconductive bone graft versus combination of osteoconductive and osteostimulative bone graft: A comparative study. Dent. Res. J. 2015, 12, 25–30.
  6. Zhou, M.; Geng, Y.-M.; Li, S.-Y.; Yang, X.-B.; Che, Y.-J.; Pathak, J.L.; Wu, G. Nanocrystalline hydroxyapatite-based scaffold adsorbs and gives sustained release of osteoinductive growth factor and facilitates bone regeneration in mice ectopic model. J. Nanomater. 2019, 2019, 10.
  7. Chen, M.; Xu, Y.; Zhang, T.; Ma, Y.; Liu, J.; Yuan, B.; Chen, X.; Zhou, P.; Zhao, X.; Pang, F. Mesenchymal stem cell sheets: A new cell-based strategy for bone repair and regeneration. Biotechnol. Lett. 2019, 41, 305–318.
  8. Lee JH, Yi GS, Lee JW, Kim DJ. Physicochemical characterization of porcine bone-derived grafting material and comparison with bovine xenografts for dental applications. J Periodontal Implant Sci. 2017 Dec;47(6):388-401 https://doi.org/10.5051/jpis.2017.47.6.388
  9. Ivanovski, S.; Vaquette, C.; Gronthos, S.; Hutmacher, D.; Bartold, P. Multiphasic scaffolds for periodontal tissue engineering. J. Dent. Res. 2014, 93, 1212–1221,21
  10. Park CH, Kim KH, Lee YM, Seol YJ. Advanced Engineering Strategies for Periodontal Complex Regeneration. Materials (Basel). 2016 Jan 18;9(1):57. doi: 10.3390/ma9010057. PMID: 28787856; PMCID: PMC5456552.
  11. Sakkas A, Wilde F, Heufelder M, Winter K, Schramm A. Autogenous bone grafts in oral implantology-is it still a “gold standard”? A consecutive review of 279 patients with 456 clinical procedures. Int J Implant Dent. 2017 Dec;3(1):23. doi: 10.1186/s40729-017-0084-4. Epub 2017 Jun 1. PMID: 28573552; PMCID: PMC5453915.
  12. Reynolds MA, Aichelmann-Reidy ME, Branch-Mays GL. Regeneration of periodontal tissue: bone replacement grafts. Dent Clin North Am. 2010 Jan;54(1):55-71. doi: 10.1016/j.cden.2009.09.003. PMID: 20103472.
  13. Keith, J.D., Jr.; Petrungaro, P.; Leonetti, J.A.; Elwell, C.W., Jr.; Zeren, K.J.; Caputo, C.; Nikitakis, N.G.;Schöpf, C.;Warner, M.M. Clinical and histologic evaluation of a mineralized block allograft: Results from the developmental period (2001–2004). Int. J. Periodont. Restor. Dent. 2006, 26, 320–327.
  14. Hölzer A, Pietschmann MF, Rösl C, Hentschel M, Betz O, Matsuura M, Jansson V, Müller PE. The interrelation of trabecular microstructural parameters of the greater tubercle measured for different species. J Orthop Res. 2012 Mar;30(3):429-34. doi: 10.1002/jor.21525. Epub 2011 Aug 10. PMID: 21834128.
  15. Lorenzen E, Follmann F, Jungersen G, Agerholm JS. A review of the human vs. porcine female genital tract and associated immune system in the perspective of using minipigs as a model of human genital Chlamydia infection. Vet Res. 2015 Sep 28;46:116. doi: 10.1186/s13567-015-0241-9. PMID: 26411309; PMCID: PMC4586017.
  16. Salamanca E, Lee WF, Lin CY, Huang HM, Lin CT, Feng SW, et al. A novel porcine graft for regeneration of bone defects. Materials (Basel) 2015;8:2523-36.
  17. Salamanca E, Lee WF, Lin CY, Huang HM, Lin CT, Feng SW, et al. A novel porcine graft for regeneration of bone defects. Materials (Basel) 2015;8:2523-36.
  18. Ramírez-Fernández M, Calvo-Guirado JL, Delgado-Ruiz RA, Maté-Sánchez Del Val JE, Vicente-Ortega V, Meseguer-Olmos L. Bone response to hydroxyapatites with open porosity of animal origin (porcine [OsteoBiol mp3] and bovine [Endobon]): a radiological and histomorphometric study. Clin Oral Implants Res. 2011 Jul;22(7):767-773. doi: 10.1111/j.1600-0501.2010.02058.x. Epub 2011 Jan 18. Retraction in: Clin Oral Implants Res. 2018 Jun;29(6):666. PMID: 21244497.
  19. Go A, Kim SE, Shim KM, Lee SM, Choi SH, Son JS, Kang SS. Osteogenic effect of low-temperature-heated porcine bone particles in a rat calvarial defect model. J Biomed Mater Res A. 2014 Oct;102(10):3609-17. doi: 10.1002/jbm.a.35022. Epub 2013 Nov 18. PMID: 24248774.].
  20. Risultati dei test interni, dati in archivio.
  21. Stiller M. et al. ‘Performance of β-tricalcium phosphate granules and putty, bone grafting materials after bilateral sinus floor augmentation in humans’ Biomaterials 2014;35(10):3154-3163.
  22. Mendes RM et al. ‘Sodium hyaluronate accelerates the healing process in tooth sockets of rat’Arch Oral Biol 2008; 53:1155–1162
  23. Asparuhova M, Kiryak D, Eliezer M, Mihov D, Sculean A. ‘Activity of two hyaluronan preparations on primary human oral fibroblasts’. J Periodontal Res 2018 Sep 27. Epub 2018 Sep 27
  24. Elkarargy A. Alveolar Sockets Preservation Using Hydroxyapatite / Beta tricalcium Phosphate with Hyaluronic Acid (Histomorphometric study). J Am Sci 2013; 9(1): 556-563]. (ISSN: 1545-1003). http://www.jofamericanscience.org. 78
  25. King SR, Hickerson WL, Proctor KG. Beneficial actions of exogenous hyaluronic acid on healing. Surgery 1991;109(1):76-84
  26. Brett D. A Review of Collagen and Collagen-based Wound Dressings. Wounds 2008;20(12).
  27. King, S.R., Hickerson, W.L. and Proctor, K.G. (1991) Beneficial Actions of Exogenous Hyaluronic Acid on Wound Healing. Surgery, 109, 76-86.
  28. Deligianni DD, Katsala ND, Koutsoukos PG, Missirlis YF, Effect of Surface Roughness of Hydroxyapatite on Human Bone Marrow Cell Adhesion, Proliferation, Differentiation and Detachment Strength. Elsevier Biomaterials 22 (2001) 87–96 2.
  29. Shu-Thung L et al. (2014) Isolation and Characterization of a Porous Carbonate Apatite From Porcine Cancellous Bone. Science, Technology, Innovation, Aug: 1-13 Brett D. A Review of Collagen and Collagen-based Wound Dressings. Wounds 2008;20(12)
  30. Nichols A, Burns DC, Christopher R. Studies on the Sterilization of Human Bone and Tendon Muscoskeletal Allograft Tissue Using Supercritical Carbon Dioxide. Journal of Orthopaedics 2009.
  31. Sawada K, Terada D, Yamaoka T, Kitamura S, Fujisato T. Cell removal with supercritical carbon dioxide for acellular artificial tissue. J Chemical Technol Biotechnol 2008;83(6):943–949.
  32. Fawzy ES. et al. Local application of hyaluronan gel in conjunction with periodontal surgery: a randomized controlled trial.Clin Oral Invest 2012;16:1229-1236
  33. Briguglio, F. et al. Treatment of infrabony periodontal defects using a resorbable biopolymer of hyaluronic acid:A randomized clinical trial. Quintessence Int2013;44:231-240
  34. Kessiena L. Aya et al. ‘Hyaluronan in wound healing: Rediscovering a major player.’ Wound Rep Reg 2014;22:579-593.Dental Journal. (2017) Vol.42:104-11. 
  35. Sasaki T, Watanabe C, Stimulation of Osteoinduction in Bone Wound Healing by High-Molecular Hyaluronic Acid. Bone. Vol. 16. No.1 January 1995:9-15
  36. Ghada Bassiouny A. ‘Bioinspired Approach for Dental Implant Fuctionalization: An Experimental Study Evaluating the Effect of Hyaluronate as Bioactive Implant Coating.’ J Am Sci 2013;9(11):187-192]. (ISSN: 1545-1003). http://www.jofamericanscience.org. 25 
  37. Shamma MM, Ayad SS, El-dibany RM, Nagui DA ‘Evaluation of the effect of hyaluronic acid mixed with biphasic calcium phosphate on bone healing around dental implants’ Alexandria Dental Journal. (2017) Vol.42 Pages:104-11 
  38. Kim JJ, Song HY, Ben Amara H, Kyung-Rim K, Koo KT. Hyaluronic Acid Improves Bone Formation in Extraction Sockets With Chronic Pathology: A Pilot Study in Dogs. J Periodontol. 2016;87(7):790-795. doi:10.1902/jop.2016.150707 
  39. Bracey DN, Seyler TM, Jinnah AH, Lively MO, Willey JS, Smith TL, et al. A decellularized porcine xenograft-derived bone scaffold for clinical use as a bone graft substitute: a critical evaluation of processing and structure. J Funct Biomater. 2018;9(3):45.https://doi.org/10.3390/jfb9030045 
  40. Renzo et al.: Tissue Dimensional Changes Following Alveolar Ridge Preservation with Different Xenografts Associated with a Collagen Membrane. Results at the 4-Month Re-Entry Surgery. Int Arch Oral Maxillofac Surg, 2017, 1:003 12.
  41. Guarnieri R, Di Nardo D, Di Giorgio G, Miccoli G, Testarelli L. Effectiveness of Xenograft and Porcine-Derived Resorbable Membrane in Augmentation of Posterior Extraction Sockets with a Severe Wall Defect. A Radiographic/Tomographic Evaluation. J Oral Maxillofac Res. 2019 Mar 31;10(1):e3. doi: 10.5037/jomr.2019.10103. PMID: 31086644; PMCID: PMC6498814
  42. Pirnazar P. et al. ’Bacteriostatic effects of hyaluronic acid.’ Journal of Periodontology 1999;70:370-374
  43. Eliezer M, Sculean A, Miron RJ, et al. ‘Hyaluronic acid slows down collagen membrane degradation in uncontrolled diabetic rats.’ J Periodontal Res. 2019;00:1–9. https ://doi.org/10.1111/jre.12665
  44. Longaker T et al. ‘Studies in Fetal Wound Healing: V. A prolonged presence of hyaluronic acid characterizes fetal wound healing.’ Ann. Surg. 1991; April:292–296. 
  45. Mast BA et al. ‘Hyaluronic Acid Modulates Proliferation, Collagen and Protein Synthesis of Cultured Fetal Fibroblast.’ Matrix,1993;13:441–446. 
  46. Asparuhova MB et al.. ‘Activity of two hyaluronan preparations on primary human oral fi broblasts.’ J Periodont Res.2018;00:1–13.
  47. Salbach J et al. ‘Regenerative potential of glycosaminoglycans for skin and bone.’ J Mol Med 2012;90:625–635.