Knochenersatz

Produkt
Schwein-Xenotransplantat
Indikationen
Geführte Geweberegeneration (GTR), geführte Knochenregeneration (GBR)
Feines Teilchen 0,25-1,00mm
Dose mit 0.5, 1.0, 2.0, 4.0 cc, Spritze mit 0.25, 0.5 cc
Grosse Partikel 1.00 - 2.00 mm
Glas mit 1.0, 2.0 cc

Warum das Schwein-Knochentransplantat SmartGraft?

SmartGraft ist ein Knochenersatzmaterial, das eine hohe Porosität mit stabilem Volumen-Remodeling verbindet [1,2]. Die hohe Porosität und die großen Poren fördern die Vaskularisierung, das Einwachsen des Knochens und die Osteointegration des Implantats nach der Operation [3,4].

Was macht SmartGraft speziell?

Struktur eines porcinen Knochentransplantats

Regenerationsfähigkeit

Knochentransplantat vom Schwein bietet eine humanähnliche Struktur für ein ausgewogenes Remodeling [5].

Oberfläche eines porcinen Knochentransplantats

Zelladhäsion

Die raue Oberfläche der humanähnlichen Schweinepartikel erleichtert die Anlagerung neuer Zellen [1,2].

Porosität des porcinen Knochenersatzmaterials

Zellmigration / Infiltration

SmartGraftDie hohe Porosität und die großen Poren verbessern die Vaskularisierung, das Einwachsen von Knochen und die Osteointegration des Implantats nach der Operation. Die anorganische Knochenmineralmatrix weist Interkonnektionen auf, die die Schüttdichte des Transplantats reduzieren und mehr Hohlraum für das Wachstum neuen Knochens zulassen [10]. SmartGraftDie Makroporen reichen von 0,1 mm bis 1,0 mm.

Sein natürlicher poröser Karbonat-Apatit, der durch das geschützte Herstellungsverfahren konserviert wird, besitzt die natürliche Porenstruktur für die Zellleitung.

So verwenden Sie SmartGraft?

3 Minuten Klebeknochen

GBR vor der Implantation (Prof. D. Bozic)

Wie funktioniert SmartGraft ?

Poröses poröses porcines Knochenersatzmaterial
  • Als aus Porzellan abgeleiteter Knochen, SmartGraft beschleunigt die Heilung des Alveolarknochens im Vergleich zu Deproteinized Bovine Bone Mineral (DBBM) [12,13].
  • Das proprietäre Reinigungsverfahren bewahrt Karbonat-Apatit [6], das nachweislich die knochenbildende Aktivität der osteogenen Zellen erhöht und die Bioresorption des Knochentransplantats vom Schwein durch Osteoklasten verbessert [7-11].
  • Die Biokompatibilität wird durch den proprietären Aufreinigungsprozess des Schweine-Knochentransplantats unterstützt [6].

Literatur

  1. Deligianni DD, Katsala ND, Koutsoukos PG, Missirlis YF, Effect of Surface Roughness of Hydroxyapatite on Human Bone Marrow Cell Adhesion, Proliferation, Differentiation and Detachment Strength. Elsevier Biomaterials 22 (2001) 87-96
  2. Shu-Thung L et al. (2014) Isolation and Characterization of a Porous Carbonate Apatite From Porcine Cancellous Bone. Science, Technology, Innovation, Aug: 1-13 (data on file)
  3. Saghiri MA, Asatourian A, Garcia-Godoy F, Sheibani N. The role of angiogenesis in implant dentistry part II: The effect of bone-grafting and barrier membrane materials on angiogenesis. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2016 Jul 1;21(4):e526-37. doi: 10.4317/medoral.21200. PMID: 27031074; PMCID: PMC4920468.
  4. Daten in der Datei
  5. Bracey DN, Seyler TM, Jinnah AH, Lively MO, Willey JS, Smith TL, et al. A decellularized porcine xenograft-derived bone scaffold for clinical use as a bone graft substitute: a critical evaluation of processing and structure. J Funct Biomater. 2018;9(3):45.https://doi.org/10.3390/jfb9030045.
  6. Verfahren zur Herstellung von porösem Carbonat-Apatit aus natürlichem Knochen. United States Patent US 8,980,328
  7. Landi E., Celotti G., Logroscino G., Tampieri A. 2003. Karbonisierter Hydroxylapatit als Knochenersatzstoff. Journal of the European Ceramic Society 23: 2931-2937.  
  8. Spense G., Patel N., Brooks R., Rushton N. 2009. Carbonate Substituted Hydroxyapatite: Resorption by Osteoclasts Modifies the Osteoblastic Response. Journal of Biomedical Materials Research Part A 217-224.
  9. Doi Y, Shibutani T, Moriwaki Y, Kajimoto T, Iwayama Y. Sintered carbonate apatites as bioresorbable bone substitutes. J Biomed Mater Res 1998;39:603-610
  10. Hasegawa M, Doi Y, Uchida A. Cell-mediated bioresorption of sintered carbonate apatite in rabbits. J Bone Joint Surg [Br] 2003;85:142-147.
  11. Spense G., Patel N., Brooks R., Rushton N. 2009. Carbonate Substituted Hydroxyapatite: Resorption by Osteoclasts Modifies the Osteoblastic Response. Journal of Biomedical Materials Research Part A 217-224.
  12. Renzo et al: Tissue Dimensional Changes Following Alveolar Ridge Preservation with Different Xenografts Associated with a Collagen Membrane. Results at the 4-Month Re-Entry Surgery. Int Arch Oral Maxillofac Surg, 2017, 1:003
  13. Guarnieri R, Di Nardo D, Di Giorgio G, Miccoli G, Testarelli L. Effectiveness of Xenograft and Porcine-Derived Resorbable Membrane in Augmentation of Posterior Extraction Sockets with a Severe Wall Defect. Eine röntgenologische/tomographische Auswertung. J Oral Maxillofac Res. 2019 Mar 31;10(1):e3. doi: 10.5037/jomr.2019.10103. PMID: 31086644; PMCID: PMC6498814.

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